ИЗМЕНЕНИЕ  ОСНОВНЫХ  ПОКАЗАТЕЛЕЙ  НАРКОЗА  ПОД  ДЕЙСТВИЕМ  РАЗЛИЧНЫХ  НЕЙРОТРОПНЫХ  ПРЕПАРАТОВ

Одинец  Александр  Дмитриевич

ассистент  кафедры  фармакологии  ГБОУ  ВПО  ИГМУ,  г.  Иркутск

E-mail: 

Левента  Алексей  Иванович

зав.  кафедрой  фармакологии  ГБОУ  ВПО  ИГМУ,  канд.  фарм.  наук

Стец  Екатерина  Игоревна

студент  3-го  курса  педиатрического  факультета  ГБОУ  ВПО  ИГМУ

Для  препаратов  стимулирующих  ЦНС  (в  том  числе  адаптогенов)  характерен  антагонизм  с  препаратами  угнетающего  типа  действия  (наркозные,  седативные,  нейролептики).  Известно,  что  адаптогенные  средства  оказывают  своеобразное  защитное  действие  и  препятствуют  действию  токсических  агентов,  в  том  числе  уменьшают  токсическое  действие  лекарственных  средств,  в  особенности  препаратов  угнетающих  ЦНС.  Адаптогены  (также  как  и  психостимуляторы)  удлиняют  время  наступления  наркоза,  укорачивают  сам  наркоз  и  его  глубину,  т.  е.  являются  «пробуждающими  средствами»  [2,  7,  с.  103—109].  Нами  использовались  следующие  препараты  сравнения:  экстракт  элеутерококка,  экстракт  родиолы  розовой,  раствор  аминазина  2,5  %,  экстракт  шлемника  Байкальского,  а  также  исследуемый  экстракт  горноколосника  колючего  (растение  семейства  толстянковые,  близкий  родственник  родиолы  розовой).  В  качестве  лабораторных  животных  использовались  белые  беспородные  крысы.  Опыты  на  животных  выполнялись  в  соответствии  с  «Правилами  проведения  работ  с  использованием  экспериментальных  животных»,  утвержденных  Приказом  МЗ  СССР  №  742  от  13.11.84  г.  [4].  Крысам  в  течение  14  дней  выпаивались  исследуемые  экстракты  (в  виде  водной  вытяжки  1:7;  в  течение  суток  выпаивалось  0,5  мл  на  животное  весом  200  г.),  либо  подкожно  за  1  час  до  эксперимента  вводился  раствор  аминазина  (доза  5  мг/кг  веса).  В  качестве  наркозных  препаратов  использовался  хлороформ,  эфир  и  30  %  раствор  спирта  этилового.  Ингаляционный  наркоз  осуществляли  путем  помещения  животного  под  стеклянный  колпак  емкостью  10  литров  вместе  с  кусочком  ваты,  пропитанным  эфиром  или  хлороформом  в  объеме  около  2—3  мл,  с  дальнейшей  регистрацией  признаков  наступления  наркоза  (снижение  двигательной  активности,  отсутствие  болевой  чувствительности  и  рефлексов,  выраженная  миорелаксация).  Сразу  после  наступления  выраженной  стадии  наркоза  животные  извлекались  из  камеры  и  фиксировалось  время  выхода  из  наркоза.  Неингаляционный  наркоз  проводился  путем  подкожной  иньекции  30  %  раствора  спирта  этилового  в  дозе  4  мл  на  животное  весом  200  грамм,  с  дальнейшей  фиксацией  признаков  наркоза.

Результаты  исследований  представлены  в  табл.  1,  2,  3.

Таблица  1.

Среднее  время  наступления  и  длительность  хлороформного  наркоза  в  контроле  и  под  действием  исследуемых  препаратов

Примечание:  *—  достоверность  по  отношению  к  контролю  при  р‹0.05.

Таблица  2.

Среднее  время  наступления  и  длительность  эфирного  наркоза  в  контроле  и  под  действием  исследуемых  препаратов

Примечание:  *—  достоверность  по  отношению  к  контролю  при  р‹0.05.

В  ходе  эксперимента  (Табл.  1,  2,  3)  выявлено:  минимальное  время  наступления  наркоза  наблюдалось  на  фоне  введения  препарата  из  шлемника  байкальского  и  раствора  аминазина,  максимальное  время  наступления  наркоза  у  препарата  родиолы  розовой  и  экстракта  горноколосника  колючего  (причём  в  случае  с  введением  30  %  раствора  спирта  этилового  и  на  фоне  эфирного  наркоза  препарат  родиолы  розовой  и  экстракт  горноколосника  колючего  отсутствовали  признаки  наркоза:  сохранялась  спонтанная  двигательная  активность,  сохранялись  рефлексы,  отсутствовала  миорелаксация,  имелась  реакция  на  световые  и  звуковые  раздражители).

Таблица  3.

Среднее  время  наступления  и  длительность  неингаляционного  наркоза  спиртом  этиловым  в  контроле  и  под  действием  исследуемых  препаратов

Примечание:  *—  достоверность  по  отношению  к  контролю  при  р‹0.05.

Экстракт  элеутерококка  показал  укорочение  общей  продолжительности  наркоза.  Проведенные  эксперименты  показали  удлинение  времени  наступления  и  уменьшение  общей  продолжительности  хлороформного  наркоза  на  фоне  введения  экстракта  родиолы  розовой,  экстракт  горноколосника  колючего  и  препарата  элеутерококка,  что  соответствует  литературным  данным.  Препарат  шлёмника  Байкальского  и  раствор  аминазина  показали  достоверное  увеличение  времени  выхода  из  наркоза,  увеличение  общей  продолжительности  наркоза  и  уменьшение  времени  наступления  наркоза,  что  говорит  о  наличии  потенцирующего  эффекта,  связанного  с  седативными  свойствами  шлемника  Байкальского  и  нейролептической  активностью  аминазина,  что  также  соответствует  литературным  данным  [1,  5,  7].  В  этих  работах  отмечено  снижение  наркотического  и  токсического  действия  барбитуратов,  эфира,  хлоралгидрата,  аминазина,  этанола,  стрихнина  и  общей  токсичности  химических  веществ  различной  структуры,  таких  как  хлорофос,  анилин,  бензол,  ацетон.  Например,  было  показано,  что  повторное  введение  экстракта  родиолы  розовой  в  течение  10  дней  сократило  значение  LD50  для  40  %  этанола  у  мышей  с  24,1  мл  /  кг  до  55,2  мл  /  кг.  [6].  Choi  S.W.,  Lee  S.I.,  Huk  K.  (1984)  выявили  значительное  увеличение  активности  печёночной  алкогольдегидрогеназы,  микросомальной  этанол-окислительной  системы,  альдегиддегидрогеназы  экстракта  Orostachys  japonicus  [8,  с.  19—21].  Chiu  P.Y.,  Leung  H.Y.,  Poon  M.K.  (2006)  показали  гепатопротекторное  действие  извлечений  из  китайского  лимонника,  связанное  с  увеличением  активности  цитохрома  Р450  печени  мышей  [9,  с.  87—92],  что  также  подтверждает  антитоксический  эффект  данной  группы  препаратов.  Вероятно  экстракт  горноколосника  колючего  обладает  свойством  активации  детоксицирующейй  монооксигеназной  системы  печени.  Действие  экстракта  горноколосника  колючего  показывает  однонаправленное  действие  с  известными  адаптогенными  средствами,  что  позволяет  сделать  вывод  о  сходстве  механизмов  действия.  Сравнительная  оценка  действия  экстракта  горноколосника  колючего,  седативных,  нейролептических  и  адаптогенных  препаратов  позволяет  сделать  вывод  о  достаточно  высоких  антигипнотических  и  антинаркозных  свойствах  исследуемого  препарата.

Список  литературы:

1.  Дардымов  И.В.,  Хасина  Э.И.  Элеутерококк:  Тайны  «панацеи».  СПб.:  Наука,  1993.  —  124  с.
2. Закусов  В.В.  Фармакология  центральных  синапсов.  —–  М.:  Медицина,  1973.  —  272  с.
3. Левента  А.И.,  Одинец  А.Д.,  Шапкин  Ю.Г.,  Щукин  Д.А.  Экспериментально-фармакологическое  изучение  влияния  природных  адаптогенов  на  скорость  и  продолжительность  ингаляционного  наркоза  //  Матер.  регион.  науч.-практ.  конф.  «Интеллектуальные  и  материальные  ресурсы  Сибири».  —  Иркутск:  Изд-во  БГУЭП,  2010.  —  С.  67—69.
4. Приказ  МЗ  СССР  №  742  от  13.11.84  г.  «Об  утверждении  правил  проведения  работ  с  использованием  экспериментальных  животных».
5. Саратиков  А.С.  Некоторые  итоги  изыскания  и  изучения  стимуляторов  центральной  нервной  системы  растительного  происхождения  //  Стимуляторы  центральной  нервной  системы.  —  Томск,  1966.  —  №  1.  —  С.  3.
6. Саратиков  А.С.,  Краснов  Е.А.  Родиола  розовая  (золотой  корень).  —  Томск:  Изд.  Томского  ун-та,  2004.  —  292  с.
7. Фруентов  Н.К.,  Серегин  Ю.М.,  Казакевич  В.М.  Влияние  извлечений  из  видов  сем.  Araliaceae  на  длительность  медикометозного  сна  //  Растит.  ресурсы.  —  1986.  —  №  1.  —  С.  103—109.
8. Choi  S.W.,  Lee  S.I.,  Huk  K.  Effect  of  ginseng  on  hepatic  alcohol  metabolizing  enzyme  system  activity  on  chronic  alcohol-treated  mouse  //  Korean  journal  of  pharmacognosy.  —  1984.  —  Vol.  20.  —  P.  13—21.
9. Chiu  P.Y.,  Leung  H.Y.,  Poon  M.K.  Schisandrin  B  induced  antioxidant  response  is  partly  mediated  by  cytochrome  P-450  2E1  catalyzed  reaction  in  mouse  liver  //  Mol.  Cell.  Biochem.  —  2006.  —  №  293.  —  Р.  87—92.