Статья опубликована в рамках: LVII Международной научно-практической конференции «Научное сообщество студентов XXI столетия. ЕСТЕСТВЕННЫЕ НАУКИ» (Россия, г. Новосибирск, 12 октября 2017 г.)
Наука: Биология
Секция: Ветеринария
Скачать книгу(-и): Сборник статей конференции
отправлен участнику
ФОТОТЕРАПИЯ КАК СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ И ПРОФИЛАКТИКИ МАСТИТА У КОРОВ
Развитие патологий молочной железы у коров является острой проблемой в животноводстве. С заболеванием коров маститом и методами его лечения тесно связаны качество и безопасность молочных продуктов, эффективность переработки молока и существенный экономический ущерб, наносимый производителям молочного сырья. Очень часто лечение животных при этом заболевании основано на применении антибиотиков, что имеет целый ряд негативных последствий. В связи с чем во всем мире растет интерес к использованию альтернативных методов лечения и профилактики мастита.
После вступления в силу ФЗ №88 «Технический регламент на молоко и молочную продукцию» тема качества сырого молока стала особо актуальна.
Согласно статистическим данным по Томской области за период с 2013 по 2015 гг. заболеваемость коров маститами составляет около 30%, что приводит к значительным экономическим потерям как на животноводческом комплексе по содержанию и выращиванию молочного поголовья, так и по области в целом (табл.1).
Таблица 1.
Заболеваемость коров маститом в период с 2013-2015гг. по данным управления ветеринарии Томской области от 25.11.2015 г.
Временной показатель |
Общее кол-во голов производственного сектора, гол. |
Коровы, больные маститом, гол. |
Заболеваемость поголовья, % |
2013 г. |
20977 |
6188 |
29,5 |
2014 г. |
20295 |
5318 |
26,2 |
2015 г. |
19308 |
4864 |
25,1 |
В результате 16% переболевших маститами коров подлежат выбраковке, а 80% маститного молока является непригодным для промышленной переработки, сюда же добавляются потери от недополучения телят, а также затраты на диагностику и лечение животных.
Впервые на базе СПК (колхоз) «Нелюбино», Томской области было проведено изучение воздействия красно-инфракрасного света (длина волны красных светодиодов – 635 нм., длина волны инфракрасных светодиодов – 840 нм., частота модуляции – 100-101 Гц.) на показатели продуктивности молока коров и общее состояние организма животных.
Для эксперимента по принципу парных аналогов были подобраны клинически здоровые коровы, которые были разделены на 2 группы: 1- опытная (n-6), 2 – контрольная (n-6). Все животные из опытной и контрольной групп имели в среднем 2-3 лактации, находились на 161 – 168 дне от искусственного осеменения, а средний удой за лактацию составлял 14,025 л.; средний возраст животных составил 3,9 лет. Технология содержания и кормления у подопытных животных была идентична и соответствовала нормам, принятым в хозяйстве.
Учитывая, что молоко не является стерильным продуктом, потому как в момент выдаивания оно подвергается бактериальному обсеменению микроорганизмами, которые находятся в сосковом канале вымени. Количество таких микроорганизмов в момент выдаивания незначительно – от 1 до нескольких тысяч в 1 мл. В основном это сапрофитные микроорганизмы, которые относятся к молочнокислым бактериям и коккам: молочнокислый стрептококк (Lactococcus lactis), сливочный стрептококк (Lactococcus cremoris), термофильный стрептококк (Streptococcus thermophilus) – являются представителями нормальной микрофлоры молока [4, с. 282].
Но существует и посторонняя микрофлора сырого молока, которая по пути постсекреторного обсеменения может возникать из разных источников: от посуды, из воздуха, с вымени коровы, из навоза, с рук доярок, из кормов и плохо обработанного доильного оборудования. Совокупность этих микроорганизмов - дрожжи, плесени, различные сапрофитные бактерии, бактерии группы кишечной палочки – вызывают бактериальную нестабильность вымени, приводя к инфицированию его тканей и молока.
В таблице 2 приведены результаты бактериологического исследования 12-ти проб сырого молока от животных
Таблица 2.
Сравнительные результаты бактериологического исследования молока
Фоновые исследования |
Конечные исследования |
||||||
Контрольная группа |
Опытная группа |
Контрольная группа |
Опытная группа |
||||
Инвентарный номер |
Результат БАК посева |
Инвентарный номер |
Результат БАК посева |
Инвентарный номер |
Результат БАК посева |
Инвентарный номер |
Результат БАК посева |
749 |
Citrobacter diversus |
2418 |
Citrobacter diversus |
749 |
Citrobacter diversus |
2418 |
Citrobacter diversus |
636 |
Citrobacter diversus |
2336 |
не обнаружено |
636 |
Citrobacter diversus |
2336 |
не обнаружено |
9151 |
Citrobacter diversus |
2411 |
Citrobacter diversus |
9151 |
Citrobacter diversus |
2411 |
Citrobacter diversus |
4310 |
не обнаружено |
3196 |
Citrobacter diversus |
4310 |
не обнаружено |
3196 |
не обнаружено |
134 |
не обнаружено |
86 |
Escherichia coli |
134 |
не обнаружено |
86 |
не обнаружено |
747 |
не обнаружено |
4620 |
Escherichia coli |
747 |
Escherichia coli |
4620 |
Escherichia coli |
Из таблицы видно, что во время фоновых исследований у 50 % животных из контрольной группы обнаружена бактерия группы кишечных палочек Citrobacterdiversus, которая способствует сбраживанию лактозы с образованием кислоты и газа. У другой половины животных патогенная микрофлора отсутствует.
В опытной группе: у 50 % животных также обнаружена бактерия Citrobacterdiversus, у двух животных - кишечная палочка Escherichia coli; у одного из подопытных животных патогенная микрофлора отсутствует.
В конце исследований в опытной группе наоборот, наблюдается снижение числа микробной обсемененности. Так, процент содержания Citrobacter diversus сократился в 1,75 раза, Escherichia coli обнаружена у одного животного.
Таким образом, результаты фонового бактериологического исследования молока указывают на присутствие патологической микрофлоры группы кишечной палочки в молоке контрольной и опытной групп, которая, согласно ранее проведённым исследованиям и литературным данным, является основным возбудителем маститов [1, с. 49; 8, с. 112].
После проведения исследования в опытной группе животных отмечается снижение числа животных с условно-патогенной микрофлорой в пробах сырого молока, что подтверждают данные Е.Ю. Смертиной о бактерицидном действии фотопрофилактики [9, с. 38].
Для изучения влияния красно-инфракрасного света на морфологические показатели периферической крови были проведены её фоновые и контрольные (месячные) исследования (см. табл. 3).
Таблица 3.
Результаты лабораторного исследования периферической крови за период проведения опыта
Исследуемый показатель |
Норма |
Контрольная группа |
Опытная группа |
||||
ФОН |
1 месяц |
2 месяц |
ФОН |
1 месяц |
2 месяц |
||
Лейкоциты тыс/мм3 |
6,0-10,0 |
9±0,7 |
6,3±0,7 |
7,15±0,6 |
9,3±1,2 |
6,5±0,8* |
8±1,1* |
Эритроциты млн \мм3 |
5,0-7,0 |
6,8±0,3 |
6,7±0,5 |
6,2±0,3 |
7,2±0,8 |
6,3±0,1* |
5,98±0,1* |
Гемоглобин гр-% |
9,4-12,5 |
11,1±0,4 |
10,8±0,7 |
10,8±0,3 |
11,5±1,2 |
9,8±0,2* |
9,8±0,4* |
Гематокрит% |
35,0-45,0 |
32,4±1,3 |
33,5±2,4 |
29,8±1,1 |
34,1±3,6 |
30,8±0,8* |
28±1,3* |
Тромбоциты тыс/мм3 |
260-710 |
354±25,5 |
276±15,5 |
233±23,7 |
340,6±24,7 |
358,5±40,3* |
271,3±60,5 |
СОЭ мм/час |
0,5-1,5 |
3±1,1 |
2 |
5,3±1,6 |
2,6±0,3 |
2,3±0,4* |
1,5±1,2* |
Лимфоциты% |
47-66 |
53±3,3 |
61,5±2,9 |
44,8±5,9 |
52,8±1,8 |
63±4,6* |
50±6,01* |
Нейтрофилы% |
21-40 |
38,6±3,7 |
32,3±2,6 |
44,5±6 |
31,8±2,7 |
32,3±2,9* |
39±5,66* |
Моноциты % |
2-7 |
5,5±1,3 |
2,6±1,05 |
5,8±1,7 |
4,8±1,04 |
2,6±0,9* |
3,8±1,9* |
Эозинофилы % |
3-10 |
2,8±0,7 |
4±0,7 |
5,3±1,7 |
10,5±2,7 |
7,6±1,5* |
7,1±2,07* |
Примечание: *статистически значимые различия относительно контроля (Р≤0,05);
Содержание количества эритроцитов в крови животных соответствует физиологической норме, но тем не менее имеет тенденцию к снижению на протяжении проведения опыта (с 6,8±0,3 до 6,2±0,3 млн\м) в контрольной группе и (с 7,2±0,8 до 5,98±0,1* млн\м) в опытной группе. Относительно гемоглобина отмечена аналогичная закономерность: в контрольной группе с 11,1±0,4 до 10,8±0,3 млн\м, в опытной группе с 11,5±1,2 до 9,8±0,4* млн\м.
Стабильное снижение числа гематокрита как в контрольной (с 32,4±1,3 % до 29,8±1,1 %), так и в опытной группе (с 34,1±3,6 до 28±1,3*%) может наталкивать на мысль о течении хронического воспалительного процесса не конкретно в вымени животных (т.к. наблюдается снижение числа соматических клеток и клинические признаки воспаления вымени не выражены), а в организме в целом. При этом число лейкоцитов на протяжении исследований остаётся в норме.
У животных контрольной группы к концу опыта отмечается повышение лейкоцитов нейтрофильного ряда, что в сочетании с результатами бактериального исследования молока подтверждает наличие воспалительного процесса в вымени. У животных опытной группы этот показатель варьирует в пределах физиологической константы.
По результатам фонового исследования у животных в обеих группах наблюдается незначительное повышение СОЭ, что может указывать на наличие бактериальных инфекций, что подтверждает фоновое исследование молока, которое выявило присутствие в его пробах условно-патогенную микрофлору - Citrobacterdiversus и Escherichia coli.
Незначительное повышение числа эозинофилов (до 10,5±2,7 %*) может указывать на возможную инвазию организма.
После 30-дневного воздействия КИК светом было отмечено незначительное снижение СОЭ у 100 % животных опытной группы, а к 60-му дню – снижение показателя до физиологической нормы, что может объясняться противовоспалительным эффектом применяемого метода.
В таблице можно наблюдать стремление цифровых значений СОЭ к верхней границы нормы. В опытной группе СОЭ понизилось на 0,3 мм/час, что, с учётом снижения количества соматических клеток в молоке коров опытной группы с отметки в810,7±210,8 тыс/мл до 439,1±159* тыс/мл указывает на положительную динамику состояния здоровья вымени под воздействием красно-инфракрасного света.
У 50 % животных обнаружена гиперсегментация – сдвиг лейкоцитарной формулы вправо, что может указывать на наличие мегалобластной анемии, болезни почек и сердца, фактор стресса и стадию выздоровления от хронического воспалительного процесса.
Для изучения воздействия КИК света на продуктивные показатели молока (% содержания жира, белка, добавленной воды, плотности), а также количество соматических клеток в нём были проведены фоновые исследования 12 проб молока на анализаторах «ЛАКТАН-1» и «СОМАТОС МИНИ».
После 15-ти дней воздействия красно-инфракрасным светом в опытной группе животных отмечено незначительное снижение числа соматических клеток с 810,7±210,8*тыс/мл до 801,2±188,8* тыс/мл., показатели молочной продуктивности не отличаются значимой динамикой (см. табл. 4).
Таблица 4.
Фоновые и опытные исследования молока по показателям продуктивности и соматическим клеткам
Показатель |
Фоновые исследования |
15-й день |
30-й день |
|||
Контрольная группа |
Опытная группа |
Контрольная группа |
Опытная группа |
Контрольная группа |
Опытная группа |
|
Ж – массовая доля жира, % |
1,7±0,14 |
1,85±0,17 |
1,6±0,13
|
1,65±0,2
|
5,6±0,82
|
4,7±1,17
|
П – плотность, кг/ м2 |
31,31±0,61 |
29,42±1,42 |
31,3±0,6
|
30,1±1,5
|
28,3±1,36 |
27,9±0,99* |
С- СОМО (сухой обезжиренный молочный остаток, % |
8,64±0,16 |
8,16±0,37 |
8,6±0,1
|
8,3±0,3
|
8,41±0,18 |
8,3±0,07 |
Б – массовая доля белка, % |
3,29±0,06 |
3,10±0,14 |
3,9±0,03 |
3,3±0,08 |
3,1±0,09 |
3,1±0,05 |
С – время подсчёта соматических клеток |
14,5±1,59
|
33,4±6,49*
|
12,5±1,39
|
27,4±4,29*
|
15,9±1,72 |
22±4,4 |
N – количество соматических клеток, тыс/мл. |
204,4±51,07 |
810,7±210,8* |
215±41,01 |
801,2±188,8* |
221,2±54,7 |
439,1±159* |
Примечание: *статистически значимые различия относительно контроля (Р≤0,05);
По истечении 30-ти дневного использования профилактики красно-инфракрасным светом проявляется выраженная положительная динамика содержания соматических клеток в молоке коров опытной группы – их количество сократилось почти в 2 раза (с 810,7±210,8* тыс/мл. до 439,1±159 тыс/мл), что указывает на существенное повышение сортности молока и снижение степени заболевания коров маститом.
На 45-й день исследований при анализе полученных результатов наблюдается стабильное понижение числа соматических клеток в молоке коров опытной группы относительно предыдущего исследования с 439,1±159 тыс/мл до 329,7±121* тыс/мл (см. табл. 5).
Таблица 5.
Результаты исследований молока за второй месяц воздействия красно-инфракрасным светом
30 день |
45-й день |
60-й день |
|||||
контроль |
опыт |
контроль |
опыт |
контроль |
опыт |
||
Ж– 5,6±0,82 П–28,3±1,36 С –8,41±0,18 Б –3,1±0,09 |
Ж–4,7±1,17 П–27,9±0,1* С –8,3±0,07 Б –3,1±0,05 |
Ж– 5,1±0,12 П–8,0±1,2 С –9,4±0,1 Б –3,0±0,05 |
Ж–4,8±1,18 П–27,9±0,99* С –8,3±0,07 Б –3,3±0,03 |
Ж– 2,7±0,6 П– 32,7±2,21 С – 9,2±0,44 Б –3,4±0,24 |
Ж–2,2±0,2 П–31,8±1,6 С –8,8±0,4 Б –3,3±0,17 |
||
С –15,9±1,72 N –221,2±54,7 |
С –22±4,4* N –439,1±159* |
С –17,9±1,82 N –250,18±64,1 |
С –20±4,1 N –329,7±121* |
С – 11,7±0,87 N –165,6±36,2 |
С –11,2±0,4* N–207,8±20,6* |
Примечание: *статистически значимые различия относительно контроля (Р≤0,05);
**Условные обозначения: Ж – массовая доля жира, %; П – плотность, кг/м2; С- СОМО (сухой обезжиренный молочный остаток, %); Б – массовая доля белка, %; В – добавленная вода;
***Условные обозначения: С – время подсчёта соматических клеток; N – количество соматических клеток, тыс/мл.
Согласно результатам таблицы 5 очевидно, что состояние вымени у животных из контрольной и опытной групп в 100% случаев можно отнести к критерию «хорошее», так как количество соматических клеток пребывает в интервалах 100-300 тыс/мл. Но такие результаты не исключают наличие мастита в единичных случаях, предвещая 2% от потерь молока [6, с. 44].
Интересно заметить, что вариабельность показателей продуктивности молока не имеет склонности к значительным изменениям. По показателям количества соматических клеток напротив, виден значительный прогресс (см. рис.1) в опытной группе – фоновые цифровые значения с 810,7±210,8 тыс/мл. к концу 2-ого месяца воздействия КИК светом упали до отметки в 207,8±20,6 тыс/мл, что относится к стандарту качества молока.
Примечание: *статистически значимые различия относительно контроля (Р≤0,05)
Рисунок 1. Динамика соматических клеток за весь период исследования
По истечению 2-го, заключительного месяца исследований, была отмечена корреляция в отношении динамики СОЭ и количества соматических клеток - в опытной группе при уменьшении СОЭ с 2,6±0,3 мм/час до 1,5±1,2* мм/час отмечается снижение числа соматических клеток с 810,7±210,8 тыс/мл до 207,8±20,6* тыс/мл (см. рис. 1). Усиленная оксигенация тканей приводит к снижению воспалительного процесса и уменьшению показателя СОЭ.
Снижение числа соматических клеток в сыром молоке может быть обусловлено повышением крово- и лимфодренажа вымени под воздействием красно-инфракрасного света, за счёт увеличения объёма циркулирующей крови в тканях вымени и увеличении оксигенации его клеток и тканей.
Таким образом можно полагать, что метод воздействия КИК светом на вымя крупного рогатого скота способствует снижению уровня воспалительного процесса и количества соматических клеток в молоке, тем самым оказывает профилактический эффект в отношении маститов.
Список литературы:
- Анюлис, Э., Изменение возбудителей субклинического мастита коров при лечении антимаститными препаратами / Анюлис Э., С. Япертас, Ю. Рудеевене, Р. Мишейкене. - Матер. международ. научно-практич. конф. «Современные проблемы ветеринарного обеспечения репродуктивного здоровья животных», посвященной 100-летию В.А. Акатова. - Воронеж, 2009. – С. 49-53.
- Батраков, А.Я. Профилактика маститов на молочном комплексе / А. Я. Батраков, В. В. Токарев, А. Р. Костяков. - Матер. Международ. научно-практич. конф. «Современные проблемы ветеринарного обеспечения репродуктивного здоровья животных», посвященной 100-летию В.А. Акатова. - Воронеж, 2009. – С. 58-60.
- Брылин, А.П., Программа по борьбе с маститами и улучшению качества молока // А. П. Брылин, А.В. Бойко. - Ветеринария, 2006. - № 5. – С. 9-11.
- Бухарин, О.В. Биология патогенных кокков / О. В. Бухарин, Б. Я. Усвяцов, О. Л. Карташова - М.: Медицина, 2001. – 282 с.
- 5.Карандашов В.И. Фототерапия / В. И. Карандашов, Е.Б. Петухов, В. С. Зродников – М.: Медицина, 2001 г. – 65 с.
- Кузьмин, Г.Н. Мастит кокковой этиологии у коров и рациональные способы его терапии и профилактики / Г. Н. Кузьмин - автореф. дисс. д-ра. вет. наук. - Воронеж, 1995. – 44 с.
- Либерман, Д. Свет-лекарство будущего / Д. Либеран – М.: СантаФе, 1991 г. – 93 с.
- Литвина, Л.А. Микробиология молока: учеб.-метод. пособие / сост.: Л.А. Литвина, В.Г. Горских, И.Ю. Анфилофьева. – Новосибирск: Изд-во НГАУ, 2012. – 112 с.
- Смертина, Е.Ю. Экспериментальное обоснование и практическое применение физиотерапии при эндометритах и маститах, вызываемых условно-патогенной микрофлорой у коров / Е. Ю. Смертина - автореф. дисс. канд. биол. наук.– Новосибирск, 2007г. – 38 с.
отправлен участнику
Оставить комментарий