Статья опубликована в рамках: XLIII Международной научно-практической конференции «Научное сообщество студентов: МЕЖДИСЦИПЛИНАРНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ» (Россия, г. Новосибирск, 23 апреля 2018 г.)
Наука: Биология
Скачать книгу(-и): Сборник статей конференции
ПРИМЕНЕНИЕ КОНКУРЕНТНОГО ЖИДКОФАЗНОГО ВАРИАНТА ИФА ДЛЯ ИЗУЧЕНИЯ ИНФЕКЦИОННОЙ АКТИВНОСТИ ВИРУСА РЕПРОДУКТИВНО-РЕСПИРАТОРНОГО СИНДРОМА СВИНЕЙ
Аннотация: разработанную тест-систему на основе жидкофазного конкурентного варианта иммуноферментного анализа применяли для изучения антигенной активности вируса РРСС. Показано, что разработанный в ФГБУ «ВНИИЗЖ» может успешно использоваться для контроля инактивированного вакцинного сырья РРСС при производстве вакцинных препаратов.
Введение
Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС) наносит значительный экономический ущерб свиноводству многих стран мира. Вирус, вызывающий у свиней РРСС, классифицирован как Arterivirus suis, относящийся к семейству Arteriviridae. Это мелкий (28,4 нм) оболочечный РНК-содержащий вирус, имеющий сферическую форму. Маркером артеривируса является способность к размножению в культурах клеток эпителия трахеальных колец свиньи. Существует два генотипа вируса: американский (А) и европейский (В), имеющие перекрестные серологические связи и различающиеся биологическими свойствами. Подтверждена циркуляция высоко-, низкопатогенных и апатогенных штаммов вируса РРСС у свиней, что и определяет характер течения болезни. В России впервые клиническое проявление РРСС установлено в 1990 году, а официально заболевание регистрируется с 1993 года (А.Л. Семенихин и др.,1992; В.А. Мищенко и является профилактическая вакцинация животных др.,1994).
Одной из основных мер контроля РРСС в нашей стране моно- и ассоциированными вакцинами. Инактивированные вирусные вакцины обычно готовят из вирулентных вирусов, разрушая вирулентность химическими или физическими методами при сохранении иммуногенности. Такие вакцины должны быть безопасны и содержать большое количество вирусного антигена, чтобы вызвать иммунный ответ и образование антител. В этой связи большое внимание уделяется контролю за качеством вакцин против РРСС.
Целью работы являлась оценка возможности применения конкурентного жидкофазного варианта иммуноферментного анализа для контроля определения активности вирусного антигена в культуральном вирусном сырье для лабораторного анализа качества вакцинного вирусного сырья используемого в инактивированных вакцинных препаратах.
Материалы и методы
Антиген. В качестве антигена для ИФА использовали очищенный и концентрированный препарат культурального антигена вируса РРСС, штамм «КПР-96» («Коллекция штаммов микроорганизмов» ФГБУ «ВНИИЗЖ»), адаптированный к перевиваемой культуре клеток Мarc-145 с титром инфекционной активности 5,0-7,0 lg ТЦД50/см3.
Коньюгат. Для выявления специфического комплекса использовали коммерческий препарат антител против IgG (H+L) кролика, меченных пероксидазой хрена («Sigma»).
ИФА. Принцип метода заключается в определении степени связывания специфических кроличьих антител с антигеном, которая выражается в виде S/N отношения (отношение оптических плотностей исследуемой сыворотки и контроля ингибиции (безсывороточного контроля). Концентрация образовавшихся комплексов «антиген – кроличье антитело» будет обратно пропорциональна концентрации специфических антител в исследуемой сыворотке. Чем больше концентрация специфических антител в сыворотке, тем ниже значение S/N.
Результаты и обсуждение
При проведении исследований вирусные пробы, полученные при наработке вакцинного сырья, были распределены по группам (не инактивированный вирус, инактивированный вирус, вирус инактивированный концентрированный в 5 и 10 раз и надосадок после концентрирования). Полученные данные исследований вируса РРСС и его антигена представлены в таблице 1.
Таблица 1.
Результаты жидкофазного варианта ИФА по изучению инфекционной и антигенной активности вируса РРСС
Характеристика группы |
Количество проб |
Среднее значение титра, lg ТЦД50/см3 |
Среднее значение титра (разведения) |
не инактивированный вирус
|
12 |
5,75+ 0,12 |
1:8 -1:16 |
инактивированный вирус
|
12 |
- |
1:4 - 1:8 |
вирус,конц. в 5 раз
|
6 |
6,15+ 0,14 |
1:16 - 1:32 |
вирус, конц. в 10 раз
|
6 |
7,0 + 0,1 |
1:32-1:64 |
надосадок
|
6 |
2,75+ 0,12 |
<1:2 |
Анализируя данные таблицы видно, что наблюдается корреляция между средними значениям инфекционных титров и разведениями в ИФА. Так, например, 5- кратный концентрат вируса имеет инфекционный титр 6,0+ 0,14 lg ТЦД50/см3 а в ИФА 1:16 - 1:32, у 10- кратного концентрата инфекционный титр 7,0 + 0,1 а в ИФА 1:32-1:64. В то же время надосадок
с инфекционным титром 2,75+ 0,12ТЦД50/см3 имеет отрицательные значения в ИФА <1:2.
В результате проведенных исследований показано, что разработаный чувствительный и специфичный конкурентный жидкофазный вариант ИФА, может использоваться в лабораторном контроле для определения активности вирусного антигена в вакцинном сырье.
Список литературы:
- Нго Т.Т., Ленхофф Г. Иммуноферментный анализ. – Москва: Мир, 1988. – 444 с.
- Bridger J.C., Woode G.N. Neonatal calf diarrhoea: identification of a reovirus-like (rotavirus) agents in faeces by immunofluorescense and immune electron microscopy // British Vet. J. – 1975. – Vol. 131. – P. 528-535.
Оставить комментарий